STUDY ON FACTORS AFFECTING THE FLOWERING OF FORGET-ME-NOT (Browallia americana L.) IN VITRO CULTURE
Abstract
Vegetative to reproductive transition depends on different factors. This study was conducted to examine factors affecting the growth and flowering of Browallia americana L. in vitro such as the age of the sample, mineral content, plant growth regulators, concentration and type of sugar, ventilation culture. The results showed that 40-day-old shoots were a suitable source of in vitro flowering (90.85% after 45 days of culture). Mineral
content had a great influence on the ability to differentiate flower buds of plants, the highest in Murashige and Skoog medium (87.22% after 45 days of culture). Meanwhile, most of the plant growth regulators which were surveyed in this study inhibited the flowering. In particular, culture medium with glucose showed higher flowering efficiency than saccharose, the highest flowering rate was at 50 mg/L glucoses (90.52%, with 3.50 flower buds/explant after 30 days of culture). In addition, ventilation culture, which used plastic wraped
with milipore filter had the highest rate of flower bud formation (average 3.58 flower buds/plant). This result is an important foundation for studying the flowering of in vitro plant culture, which will be one of the great paradigm plants for teaching and basic research.
Downloads
References
vitro flowering of shoots regenerated from
culture nodal explant of Rosa hybrida cv
‘Heirloom’. Science Asia. 2010; 36:161–164.
[2] Dương Tấn Nhựt. Công nghệ sinh học thực
vật: Nghiên cứu cơ bản và ứng dụng (Plant
Biotechnology: Basic Research and Appication), tập 1. TP. Hồ Chí Minh: Nhà Xuất bản
Nông nghiệp; 2011.
[3] Wang G.Y, Yuan M.F, Hong Y. In vitro
flowering induction in rose. In Vitro Cellular and Development Biology – Plant. 2002;
38(5):513–518.
[4] Te-chato S, Nujeen P, Muangsorn S. Paclobutrazol enhance budbreak and flowering of Friederick’ s Dendrobium orchid in
vitro. Journal of Agricultural Technology.
2009; 5(1):157–165.
[5] Kantamaht K, Patthara S, Kamnoon K. In
vitro flowering of shoots regenerated from
culture nodal explant of Rosa hybrida cv
‘Heirloom’. Science Asia. 2010; 36:161–164.
[6] Vu N.H, Anh P.H, Nhut D.T, The role of
sucrose and different cytokinins in the in
vitro floral morphogenesis of Rose (hybrid
tea) cv. “First Prize”, Plant Cell Tiss. Org.
Cult. 2006; 87:315–320.
[7] Wang G.Y, Yuan M.F, Hong Y. In vitro
flowering induction in rose. In Vitro Cellular and Development Biology – Plant. 2002;
38(5):513–518.
[8] Dương Tấn Nhựt, Lê Văn Thức, Trần Trọng
Tuấn, Trương Thị Diệu Hiền, Hoàng Xuân
Chiến, Nguyễn Phúc Huy, Nguyễn Bá Nam,
Vũ Quốc Luận. Nghiên cứu một số yếu tố
ảnh hưởng đến sự hình thành hoa in vitro ở
cây Torenia (Torenia fournieri L.). Tạp chí
Khoa học và Công nghệ. 2013; 51(6):689–702.
[9] Nguyễn Thị Kim Yến, Nguyễn Phúc Huy,
Hoàng Văn Cương, Nguyễn Thị Nhật Linh
và cộng sự. Ảnh hưởng của than hoạt tính
và nuôi cấy thoáng khí lên khả năng sinh
trưởng và phát triển của cây hoa đồng tiền
(Gerbera jamesonii) in vitro và ex vitro.
Tạp chí Khoa học và Công nghệ. 2013;
51(4):435–446.
[10] Tran Trong Tuan, Doan Do Tuong Han,
Nguyen Huu Ho, Duong Tan Nhut The
endogenous responses during the flowering stage of Torenia fournieri L. under
LED light. Journal of Biotechnology. 2018;
16(4):659–667.
[11] Trần Trọng Tuấn, Nguyễn Hữu Hổ, Dương
Tấn Nhựt. Ảnh hưởng của gibberrellic acid,
proline và spermidine lên sự hình thành hoa
của cây Torenia (Torenia fournieri L.). Tạp
chí Công nghệ Sinh học. 2015; 13(1):123–130.
[12] Trần Trọng Tuấn, Đỗ Đức Thăng, Nguyễn
Hữu Hổ, Dương Tấn Nhựt. Ảnh hưởng của
ánh sáng và đường lên quá trình ra hoa của
cây hoa mõm chó (Torenia fournieri L.) nuôi
cấy in vitro. Tạp chí Công nghệ Sinh học.
2015; 13(4A):1303–1311.
[13] Dương Tấn Nhựt. Công nghệ sinh học thực
vật, tập 5. TP. Hồ Chí Minh: Nhà Xuất bản
Nông nghiệp; 2013.
[14] Murashige T, Skoog F. A revised medium
for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia plantarum. 1962; 15(3):473–497.
[15] Duncan D.B. Multiple range and multiple F
test. Biometrics. 1995; 11: 1 - 42.
[16] Christian Breton, Daniel Cornu, Dominique
Chriqui, Annie Sauvanet, Pierrette Capelli,
Eric Germain and Christian Jay-Allemand.
Somatic embryogenesis, micropropagation
and plant regeneration of “Early Mature”
walnut trees (Juglans regia) that flower in
vitro. Tree Physiology. 2004; 24:425–435.
[17] Wei - Chin Chang and Yue – Ie Hsing. In
vitro flowering of embryoids derived from
mature root callus of ginseng (Panax ginseng). Nature. 1980; 284:341–342.
[18] Franklin G, Pius P.K, Ignacimuthu S. Factors affecting in vitro flowering and fruiting
of green pea (Pisum sativum L.). Euphytica.
2000; 115(1):65–74.
[19] Nguyễn Đức Lượng. Sinh học thực vật, sinh
học động vật và hệ sinh thái, tập 2 - Sinh học
đại cương. TP. Hồ Chí Minh: Nhà Xuất bản
Đại học Quốc gia Thành phố Hồ Chí Minh; 2014.
[20] Koh W.L, Loh C.S. Direct somatic embryogenesis, plant regeneration and in vitro
flowering in rapid-cycling Brassica napus.
Plant Cell Reports. 2000; 19 (12):1177.
[21] Aziemah Abdul Manan, Rosna Mat Taha,
Elnaiem Elaagib Mubarak & Hashimah
Elias. In vitro flowering, glandular trichomes ultrastructure, and essential oil accumulation in micropropagated Ocimum
basilicum L. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant. Springer. 2016;
52:303–314.
[22] Carla F. C, Wolffe F.S, Claudinei S. S,
Marcelo D. M, Ilio F.C, Diego I.R, Maurecilne L.S. In vitro regeneration and flowering of Portulaca grandiflora Hook. Ornamental Horticulture. 2020; 25(4):443–449.
DOI: 10.1590/2447-536x.v25i4.2077.
[23] Zang Z, Leung D.W.M. A comparison of
in vitro with in vivo flowering in Gentian.
Plant cell, tissue and organ culture. 2000; 63:223–226.
[24] Chung-Chih Lin, Chuoun-Sea Lin, WeiChin Chang. In vitro flowering of Bambusa edulis and subsequent plantlet survival. Plant Cell, Tissue and Organ Culture.
2002; 72:71–78.
[25] Singh B, Sharma S, Rani G, Hallan V,
Zaidi A.A, Nagpal A, Virk G.S. In vitro
micrografting for production of Indian Citrus Ringspot Virus (ICRSV) free plants of
Kinnow mandarin (Citrus nobilis Lour × C. deliciosa Tenora). Plant Biotechnology
Reports. 2008; 2:137–143.